Antibiograma por difusión en disco (Kirby-Bauer)

Fundamento

Se siembra un césped bacteriano de turbidez estandarizada y se colocan discos con carga fija de antibiótico. El antibiótico difunde y genera un halo de inhibición cuyo diámetro se interpreta como sensible, intermedio o resistente según tablas normalizadas.

Analito (qué se mide)

Sensibilidad a antibióticos

Matriz (en qué muestra)

Cultivo puro

Equipamiento necesario¿Dónde lo compro?

Estufa 35 °C; densitómetro McFarland; calibre o regla; dispensador de discos.

Reactivos¿Dónde lo compro?

Agar Mueller-Hinton; discos de antibiótico; solución fisiológica estéril; cepas ATCC de control.

Material de laboratorio¿Dónde lo compro?

Placas de 90 o 150 mm; hisopos estériles; pinzas.

Consumibles¿Dónde lo compro?

Discos de antibiótico; hisopos.

Unidad

mm (halo) · S / I / R

Rango de referencia

Según puntos de corte CLSI o EUCAST vigentes

Norma que describe la técnica

CLSI M02; EUCAST

Edición y vigencia de la norma

Los documentos del CLSI se revisan de forma continua y el M100 de puntos de corte se actualiza todos los años: la edición 2024 es la 34ª. Un antibiograma informado con puntos de corte viejos puede clasificar mal a una cepa, así que la edición es parte del resultado.

Volumen de muestra

Una colonia aislada de un cultivo puro de 18 a 24 horas

Conservación y transporte

Placa o tubo con el cultivo, a temperatura ambiente o a 4 °C, procesado dentro de las 24 horas. El cultivo tiene que ser puro y fresco: una colonia vieja o mezclada da una identificación equivocada.

Límite de detección típico

1 mm de diferencia en el halo de inhibición

Incertidumbre típica

±2 a 3 mm en el halo; el espesor del agar y el inóculo son las variables críticas

Área

Microbiología; Clínico/bioquímico

Fecha de última actualización: 3/9/2026